白鰭飛魚(Cheilopogon unicolor)，為臺灣東部海域飛魚優勢種之一，在飛魚的漁獲中占有相對高的比例。雖然其並非高經濟價值魚種，但卻是高經濟價值洄游魚種的食餌，同時也是東海岸沿近海漁業的目標魚種之一，亦為蘭嶼飛魚文化的主要捕撈種之一，因此對臺灣同時具有生態、文化以及漁業三個層面的意涵。白鰭飛魚作為臺灣體型最大的大型飛魚之一，也是唯一同時出現在臺灣東部各處、同時被各地利用的重要飛魚魚種，且從生物量方面來看，可說是臺灣利用量最高的飛魚魚種，故具有研究和資源管理的重要性。
本研究使用2008至2014年間於基隆、宜蘭、花蓮、臺東、綠島、蘭嶼、屏東等臺灣東部海域以流刺網、定置網、追逐網等方式採集得之樣本，利用樣本耳石的微細構造、生殖腺外觀及生殖腺組織切片進行年齡成長推估與生殖型態之基礎漁業生物學研究，以供作為修正現行或制定未來漁業政策的科學參考依據。採集之白鰭飛魚成魚雄魚平均尾叉長為28.17±1.81公分，雌魚平均尾叉長為29.65±2.57公分。白鰭飛魚日齡經迴歸統計分析結果為星狀石所判讀之日週輪加12天，其所推測之范氏成長方程式為Lt=28.69×(1－e^-3.99(t-0.04))；由生殖生物學研究結果可推測白鰭飛魚的卵細胞發育型態為非同步成熟型，而產卵型態則屬於批次產卵型魚種，其平均批次產卵數為31662±2532顆水卵；藉由日週輪回推及生殖腺組織切片結果可推測該魚種具夏季及冬季兩產卵季節，而將生殖腺指數與最大卵徑進行線性迴歸分析，可推測出當生殖腺指數越大時，其卵徑也越大。
根據以上結果，白鰭飛魚屬較易恢復的漁業資源，不易因捕撈過度而造成其資源崩潰，然而仍應加強民眾的海洋教育及保育規範，並利用科學數據作為管理參考，使這資源能在利用與保育之間找到平衡點，以保護飛魚漁業資源可永續利用。

Limpidwing flyingfish (Cheilopogon unicolor) is one of the dominant species in the eastern waters of Taiwan, and it occupies a high proportion in the catch of flyingfish. Although it is not a high economic value fish species, it is a prey for high economic valued predator fish species, it is one of the target fish species of the east coast offshore fishery, and it is also one of the main catch species in the culture of Lanyu flyingfish. Therefore, it is crucial for Taiwan in three aspects: ecology, culture and fishery. The C. unicolor is the largest flyingfish in Taiwan, and also the important flyingfish species that be used and appeared in all parts off eastern Taiwan at the same time. From the perspective of biomass, it is also the most harvested flyingfish species in Taiwan, so that it has the importance of research and resource management.
This study used the gill net, set net, and drive-in net to collect flyingfish samples from Keelung, Yilan, Hualien, Taitung, Lyudao, Lanyu and Pingtung in the eastern Taiwan from 2008 to 2014. Using microstructure of otolith, macroscopic and microscopic examinations of gonad, parameters of basic fisheries biology such as age and reproductive type of the fish were examined to provide as a scientific reference for revision of the current fishery policies or future fishery policies making. The average fork length of male C. unicolor was 28.17±1.81 cm, and the length of female was 29.65±2.57 cm. Daily age of C. unicolor determined by regression test was the daily growth increments interpreted by asteriscus reading plus twelve days. Von Bertalanffy growth function of the fish was Lt=28.69×(1－e^-3.99(t-0.04)). For the reproduction of C. unicolor, the egg development pattern was asynchronous type, the spawning pattern belonged to the batch spawner type, and the average batch spawning number was 31662±2532 hydration eggs. It could be speculated that the C. unicolor had summer and winter spawning seasons by the back-calculation of daily growth increment and the result of the gonad tissue slice. A positive linear regression of gonadosomatic index and maximum oocyte diameter was found.
The result suggested that the C. unicolor resource is easily recovered from overfishing. However, public marine education and norms with references to scientific studies and still necessary for the protection and sustainable use of the fishery resources.

目錄
論文審定書 i
謝誌... ii
中文摘要 iii
Abstract iv
目錄... vi
圖目錄 ix
表目錄 xi
第一章、前言 1
1.1. 漁業資源管理的重要性 1
1.2. 飛魚對臺灣之重要性 2
1.3. 飛魚漁業生物學 3
1.4. 研究動機及目的 5
第二章、材料與方法 7
2.1. 樣本蒐集 7
2.2. 年齡成長 7
2.2.1. 基本形質資料測定 7
2.2.2. 基本形質與樣本數量資料分析 8
2.2.3. 耳石玻片製備 8
2.2.4. 耳石判讀及選定 10
2.2.5. 成長解析 10
2.2.6. 飛魚成長方程式之比較 11
2.3. 生殖生物學研究 11
2.3.1. 利用輪紋所得日齡往回推算產卵日期 11
2.3.2. 生殖腺指數與肥滿度係數 11
2.3.3. 批次孕卵數估計 12
2.3.4. 卵徑測量與卵徑頻度分析 12
2.3.5. 飛魚批次孕卵數之比較 13
2.3.6. 性腺組織切片 13
2.3.7. 卵徑與生殖腺指數之關係 15
2.3.8. 白鰭飛魚雌魚生殖腺指數與生殖腺重及尾叉長之關聯性 15
2.3.9. 臺灣東部海域各採樣點白鰭飛魚雌魚生殖腺指數關係 15
2.3.10. 50%成熟體長 16
第三章、結果 17
3.1. 年齡成長 17
3.1.1. 體長頻度圖 17
3.1.2. 尾叉長與全長及全重關係 17
3.1.3. 性比年度變化及其在不同尾叉長組別下之關係 18
3.1.4. 耳石構造之探討與最適耳石選定 18
3.1.5. 星狀石長軸半徑與尾叉長關係 19
3.1.6. 礫石及星狀石輪差驗證 19
3.1.7. 成長解析 19
3.1.8. 飛魚成長方程式之比較結果 20
3.2. 生殖生物學 20
3.2.1. 輪紋所得日齡往回推算產卵日期 20
3.2.2. 生殖腺指數及肥滿度係數 21
3.2.3. 卵徑頻度分布 21
3.2.4. 飛魚批次孕卵數之比較結果 22
3.2.5. 性腺組織切片 22
3.2.6. 卵徑與生殖腺指數之關係結果 25
3.2.7. 白鰭飛魚雌魚生殖腺指數與生殖腺重及尾叉長之關聯性 26
3.2.8. 臺灣東部海域各採樣點白鰭飛魚雌魚生殖腺指數關係 26
3.2.9. 50%成熟體長 26
第四章、討論 27
4.1. 耳石差異 27
4.2. 成長推估 27
4.3. 星狀石日輪驗證方式 28
4.4. 產卵型式季節分析 29
4.5. 飛魚孕卵數差異之分析比較 30
4.6. 卵徑與生殖腺指數關係之分析 31
4.7. 白鰭飛魚雌魚生殖腺指數與生殖腺重及尾叉長之關聯性 31
4.8. 臺灣東部海域各採樣點白鰭飛魚雌魚生殖腺指數關係 32
4.9. 管理意涵與政策建議 32
參考資料 34
中文部分 34
英文部分 35
網路資訊 41

圖目錄
圖1. 白鰭飛魚(Cheilopogon unicolor)外觀照(a) 為側面展鰭照 (b)為上方展鰭照。 42
圖2. 本研究白鰭飛魚樣本採集地點分布圖。 43
圖3. 本研究使用之臺灣東部海域白鰭飛魚樣本尾叉長頻度圖。 44
圖4. 白鰭飛魚全長與尾叉長關係圖。(a)雄魚 (b)雌魚 (c)雌雄合併。 45
圖5. 白鰭飛魚尾叉長與全重關係圖。(a)雄魚 (b)雌魚 (c)雌雄合併。 46
圖6. 臺灣東部海域白鰭飛魚雌魚所佔性別比例按年份地點分。 47
圖7. 白鰭飛魚各尾叉長性別比例分布圖。 48
圖8. 白鰭飛魚三種耳石(扁平石、礫石、星狀石)外部型態。 49
圖9. 白鰭飛魚扁平石橫切面圖。 50
圖10. 白鰭飛魚星狀石(a) 外觀 (b) 表面微細構造。 51
圖11. 白鰭飛魚礫石。 52
圖12. 白鰭飛魚尾叉長與星狀石長軸半徑關係圖。 53
圖13. 白鰭飛魚星狀石與礫石關係圖。 54
圖14. 白鰭飛魚范氏成長方程式成長曲線圖形。 55
圖15. 以日輪回推白鰭飛魚產卵頻度圖。 56
圖16. 白鰭飛魚生殖腺指數(a) 雄魚 (b) 雌魚。 57
圖17. 白鰭飛魚肥滿度係數(a) 雄魚 (b) 雌魚。 58
圖18. 白鰭飛魚雌魚卵巢前、中、後部位分區示意圖。 59
圖19. 白鰭飛魚雌魚卵巢前、中、後部位卵徑頻度圖。 60
圖20. 一次成長期(Primary growth, PG)。 61
圖21. 皮質濾泡期(Cortical alveoli, CA)。 61
圖22. 卵黃堆積第一期(Primary vitellogenesis, Vtg1)。 62
圖23. 卵黃堆積第二期(Secondary vitellogenesis, Vtg2)。 62
圖24. 卵黃堆積第三期(Tertiary vitellogenesis, Vtg3)。 63
圖25. 卵黃聚合期(Yolk coalescence, YC)。 63
圖26. 水卵期(Hydration, H)。 64
圖27. 產卵後濾泡(Postovulatory follicles, POF)。 64
圖28. 白鰭飛魚雌魚最大卵徑與生殖腺指數關係圖。 65
圖29. 白鰭飛魚雌魚生殖腺指數與生殖腺重關係圖。 66
圖30. 白鰭飛魚雌魚生殖腺指數與尾叉長關係圖。 67
圖31. 臺灣東部海域各採樣點白鰭飛魚雌魚GSI值頻度圖。 68
圖32. 臺灣東部海域各採樣點白鰭飛魚雌魚GSI值機率密度圖。 69
圖33. 白鰭飛魚雌魚50%成熟體長圖。 70
圖34. 白鰭飛魚、紅斑鰭飛魚、尖頭細身飛魚、斑鰭飛魚范氏成長方程式比較圖。 71
圖35. 白鰭飛魚、紅斑鰭飛魚、尖頭細身飛魚、斑鰭飛魚雌魚批次孕卵數比較圖。 72

表目錄
表1. 白鰭飛魚月別採集樣本體長量測與雌魚性別比例列表 73
表2. 性腺組織切片步驟表 79
表3. 性腺組織切片HE染色流程表 80
表4. 白鰭飛魚雌雄間全長與尾叉長之關係ANCOVA 分析 81
表5. 白鰭飛魚雌雄間全重與尾叉長之關係ANCOVA 分析 81
表6. 讀輪平均誤差百分比公式表 82
表7. 本研究所整理4組飛魚魚種、採樣地點、范氏成長方程式參數列表，表中依飛魚屬分類 85
表8. 白鰭飛魚雌魚產卵能力前期階段與達產卵能力期階段之兩迴歸方程式Chow test分析 86

參考資料

中文部分

李培芬、李依紋、蕭人瑄等，2006。台灣的自然資源與生態資料庫III－農林漁牧，初版。臺北市，行政院農業委員會林務局。

林忠暉，2010。台灣東部尖頭細身飛魚耳石年齡與成長研究及其在漁業管理上之意涵。國立中山大學海洋事務研究所碩士論文，2010年7月，頁1-66。

林筱齡，2003。利用耳石估算台灣海域劍旗魚幼魚的日齡與成長。國立臺灣大學海洋研究所碩士論文，2003年11月，頁1-67。

胡舜智、余廷基，1976。有關鰻魚的成熟生殖，臺灣省水產試驗所試驗報告，(26)，頁97-104。

陳朝清(譯)，1998。魚類生態學(原作者:殷名稱)，初版。臺北縣，農學有限公司。(原著出版年:1995)

崔雅婷，2013。台灣東部尖頭細身飛魚之基礎生殖生物學研究。行政院國家科學委員會補助大專學生研究計畫研究成果報告(編號:NSC101-2815-C-110-053-M)。臺北市，國家科學委員會。

曾奕瑄，2017。台灣東部蘭嶼海域紅斑鰭飛魚(Cheilopogon atrisignis)的成長繁殖與管理意涵。國立中山大學海洋事務研究所碩士論文，2017年7月，頁1-66。

黃士宗、郭慶老(譯)，1990。水產資源學(原作者:能勢幸雄、石井丈夫、清水誠)，第四版。臺北市，中國水產。(原著出版年:1988)

鄭利榮(譯)，1997。魚的資源學(原作者:川崎健)，初版。臺北市，茂昌圖書有限公司。(原著出版年:1983)

蔡嘉和，2016。台灣黑潮流域斑鰭飛魚漁業生物學研究及其在漁業管理上之應用。國立中山大學海洋事務研究所碩士論文，2016年1月，頁1-72。

蕭琍婷、陳朝清、吳春基、陳羿惠、何珈欣，2017。臺灣西南海域黑䱛之生殖生物學研究，水產研究，25 (1)，15-25。

英文部分

Abe, O., Kawano, M., and Teshima, K. 1993. Ovarian Maturation and Spawning of Flying Fish, Cypselurus hiraii, in the Southwest Japan Sea. Bulletin of the Seikai National Fisheries Research Institute. 71, 67-81.

Aldanondo, N., Cotano, U., Etxebeste, E., Irigoien, X., Alvarez, P., Martínez de Murguía, A., and Herrero, D. L. 2008. Validation of daily increment deposition in the otoliths of European anchovy larvae ( Engraulis encrasicolus L. ) reared under different temperature conditions. Fisheries Research. 93(3), 257-264.

Beamish, R. J., and Fournier, D. A. l98l. A Method for Comparing the Precision of a Set of Age Determinations. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences.
38(8), 982-983.

Brothers, E. B., 1979. Age and Growth Studies on Tropical Fishes in: S. B. Saila and P. M. Roedel (Eds.), Stock Assessment for Tropical Small Scale Fisheries, Proceedings of an International Workshop, International Center for Marine Resources Development, USA, 119-136.

Brown-Peterson, N. J., Wyanski, D. M., Saborido-Rey, F., Macewicz, B. J., and Lowerre-Barbieri, S. K. 2011. A Standardized Terminology for Describing Reproductive Development in Fishes. Marine and Coastal Fisheries. 3(1), 52-70.

Campana, S. E., and Neilson, J. D. 1985. Microstructure of Fish Otoliths. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 42(5), 1014-1032.

Campana, S. E. 2001. Accuracy, precision and quality control in age determination, including a review of the use and abuse of age validation methods. Journal of Fish Biology. 59(2), 197-242.

Chang, C. W., Lin, C. H., Chen, Y. S., Chen, M. H., and Chang, S. K. 2012b. Age validation, growth estimation and cohort dynamics of the bony flying fish Hirundichthys oxycephalus off eastern Taiwan. Aquatic Biology. 15(3), 251-260.

Chang, S. K., Chang, C. W., and Ame, E. 2012a. Species composition and distribution of the dominant flyingfishes (Exocoetidae) associated with the Kuroshio Current, South China Sea. Raffles Bulletin of Zoology. 60(2), 539-550.

Chilton, D. E., and Beamish, R. J., 1982. Age determination methods for fishes studied by the Groundfish Program at the Pacific Biological Station, 1st ed. Canadian Special Publication of Fisheries and Aquatic Sciences, Ottawa.

Chittenden, C. M., Butterworth, K. G., Cubitt, K. F., Jacobs, M. C., Ladouceur, A., Welch, D. W., and McKinley, R. S. 2009. Maximum tag to body size ratios for an endangered coho salmon (O. kisutch) stock based on physiology and performance. Environmental Biology of Fishes. 84(1), 129-140.

Chow, G. C. 1960. Tests of Equality Between Sets of Coefficients in Two Linear Regressions. Econometrica. 28(3), 591-605.

Correia, A. T., Manso, S., and Coimbra, J. 2009. Age, growth and reproductive biology of the European conger eel (Conger conger) from the Atlantic Iberian waters. Fisheries Research. 99(3), 196-202.

De Araújo, A. S., and Chellappa, S. 2002. Reproductive strategy of the flying fish, Hirundichthys affinis Günther (Osteichthyes, Exocoetidae). Revista Brasileira de Zoologia. 19(3), 691–703.

FAO. 1994. World review of highly migratory species and straddling stocks. FAO Fisheries Technical Paper. 337, 1-70.

Hardin, G. 1968. The Tragedy of the Commons. Science. 162(3859), 1243-1248.

Hunter, J. R., Lo, N. C., and Leong, R. J., 1985. Batch Fecundity in Multiple Spawning Fishes, in: R. Lasker (Ed.), An Egg Production Method for Estimating Spawning Biomass of Pelagic fish: Application to the Northern Anchovy, Engraulis mordax, United States Department of Commerce, National Oceanic and Atmospheric Administration Technical Report National Marine Fisheries Service, 67-78.

Ichimaru, T. 2008. The life cycle of three species of flyingfish in the north waters of Kyusyu and the recruitment of young flyingfish to the fishing ground. Bulletin of Nagasaki Prefectural Institute of Fisheries. 33, 7-110.

Johnson, R., Wolf, J., and Braunbeck, T., 2009, January. OECD Guidance document for the diagnosis of endocrine-related histopathology of fish gonads, Paper presented at the OECD, Paris.

Kato, K., Onoda, A., Maeda, H., and Kawabe, K. 2006. Some fisheries biological information on flying fish collected from the waters around Okino-torishima Island southern Japan. Tokyo Metropolitan Research on Fisheries Science. 1, 65-71.

Khokiattiwong, S., Mahon, R., and Hunte, W. 2000. Seasonal Abundance and Reproduction of the flyingfish, Hirundichthys affinis, off Barbados. Environmental Biology of Fishes. 59(1), 43–60.

King, M., 1995. Fisheries Biology, Assessment and Management, 1st ed. Blackwell Science, United Kingdom.

King, M., 2007. Fisheries biology, Assessment and Management, 2nd ed. Blackwell Publishing, Australia.

Lewallen, E. A., Pitman, R. L., Kjartanson, S. L., and Lovejoy, N. R. 2011. “Molecular systematics of flyingfishes (Teleostei: Exocoetidae): evolution in the epipelagic zone.” Biological Journal of the Linnean Society. 102(1), 161-174.

Lewis, J. B. 1961. The growth, breeding cycle and food of the flyingfish Parexocoetus brachypterus hillianus (Gosse). Bulletin of Marine Science. 11(2), 258-266.

Lewis, J. B., Brundritt, J. K., and Fish, A. G. 1962. The biology of the flyingfish, Hirundichthys affinis. Bulletin of Marine Science. 12(1), 73-94.

Lowenstein, O., 1971. The Labyrinth, in: W. S. Hoar and D. J. Randall (Eds.), Fish Physiology, Academic Press, New York, 207-240.

Lowerre-Barbieri, S. K., Brown-Peterson, N. J., Murua, H., Tomkiewicz, J., Wyanski, D. M., and Saborido-Rey, F. 2011. Emerging Issues and Methodological Advances in Fisheries Reproductive Biology. Marine and Coastal Fisheries: Dynamics, Management, and Ecosystem Science. 3(1), 32-51.

Morales-Nin, B. 1992. Determination of growth in bony fishes from otolith microstructure. FAO Fisheries Technical Paper. 322, p51.

Murua, H., and Saborido-Rey, F. 2003. Female Reproductive Strategies of Marine Fish Species of the North Atlantic. Fisheries Science. 33, 23-31.

Nelson, J. S., Grande, T. C., and Wilson, M. V. H., 2016. Fishes of the World, 5th ed. John Wiley and Sons, New York.

Ogasawara Fisheries Center. 2003. Flyingfish research in the northern sea area of Iwo Jima. Ocean island. 5(2), 1.

Oliveira, M. R., Carvalho, M. M., Silva, N. B., Yamamoto, M. E., and Chellappa, S. 2015. Reproductive aspects of the flyingfish, Hirundichthys affinis from the Northeastem coastal waters of Brazil. Brazilian Joumal of Biology. 75(1), 198-207.

Oxenford, H. A., Hunte, W., Deane, R., and Campana, S. E. 1994. Otolith age validation and growth-rate variation in flyingfish (Hirundichthys affinis) from the eastern Caribbean. Marine Biology. 118(4), 585-592.

Pannella, G. 1971. Fish Otoliths: Daily Growth Layers and Periodical Patterns. Science. 173(4002), 1124-1127.

Ricker, W. E., 1958. Handbook of computation for biological statistics of fish populations, 1st ed. Bulletin 119 of the Fisheries Resource Board, Canada Ottawa.

Stevens, P. W., Bennetta, C. K., and Berg, J. J. 2003. Flyingfish Spawning (Parexocoetus brachypterus) in the Northeastern Gulf of Mexico. Envirnmental Biology of Fishes. 67(1), 71-76.

Wallace, R. A., and Selman, K. 1981. Cellular and Dynamic Aspects of Oocyte Growth in Teleosts. American Zoologist. 21(2), 325-343.

Wilson, C. A., and Dean, J. M. 1983. The Potential Use of Sagittae for Estimating Age of Atlantic Swordfish, Xiphias gladius. NOAA Technical Report NMFS. 8, 151-156.

Yacapin, N. C. 1991. Growth, Mortality and Recruitment of Short-Wing Flying Fish Oxyphorhamphus micropterus in Bohol Sea, Philippines. Fishbyte. 9(2), 10-12.

網路資訊

邵廣昭，2018。世界魚類分類階層樹狀名錄。20181130，臺灣魚類資料庫:
http://fishdb.sinica.edu.tw/AjaxTree/tree.php

鍾國芳，2012。物種名錄。20181130，中央研究院生物多樣性研究中心:
http://taibnet.sinica.edu.tw/chi/taibnet_species_detail.php?name_code=380897